book_cover_img The Korean Society of Marine Life Science Journal of Marine Life Science eISSN 2508-7134
open_access

Year of Launching : 2016
Frequency : Twice a year (June 15, December 15)
Doi Prefix : 10.23005/ksmls.

Most Read Article

Vol.9 No.1 pp.47-52

Biological Rhythm Changes of Dominant Tidepool gunnel Pholis nebulosa in Drifting Seaweeds

Jin A Kim, Min Ju Kim, Young-Su Park, Jun-Hwan Kim, Cheol Young Choi

Vol.9 No.1 pp.41-46

Sex Change Scale and Pattern of Tegillarca granosa (Bivalvia : Arcidae)

Mi Ae Jeon, Hyeon Jin Kim, So Ryung Shin, Jung Jun Park, Hyun Park, Jung Sick Lee

Journal Search Engine

Download PDF Export Citation Metrics Korean Bibliography
ISSN : (Print)
ISSN : 2508-7134(Online)
Journal of Marine Life Science Vol.10 No.2 pp.169-175
DOI : https://doi.org/10.23005/ksmls.2025.10.2.169

Morphology and Microanatomical Structure of the Inner Ear in the Northern Snakehead Channa argus (Perciformes: Channidae)

Seong Jin Kim1, Hyeon Jin Kim1*, Doo-Jin Hwang2, Jung Sick Lee1
1Department of Aqualife Medicine, Chonnam National University, Yeosu 59626, Korea
2Department of Marine Production Management, Chonnam National University, Yeosu 59626, Korea
Corresponding Author Hyeon Jin Kim E-mail : hjin9577@naver.com
November 21, 2025 ; November 27, 2025 ; November 27, 2025

Abstract


This study was conducted to provide basic information about the auditory organs of teleost through the morphology and microanatomical structure of the inner ear in the northern snakehead Channa argus. The inner ear of C. argus consisted of three semicircular canals (anterior semicircular canal, horizontal semicircular canal, posterior semicircular canal) and three otolith end organs (saccule, utricle, lagena). The length of the semicircular canals was longest in the anterior semicircular canal (81.72±4.42 mm, TL 438.3±11.4 mm) and shortest in the horizontal semicircular canal (25.34±2.26 mm, TL 438.3±11.4 mm). The histological structure of the semicircular canals and ampulla consisted of an inner epithelial layer, connective tissue, and an outer epithelial layer. Part of the inner epithelial layer of the ampulla consisted of ciliated columnar epithelial cells and was connected to the cupula of the lumen. The otolith end organs consisted of the otolith sac and the otolith inside. Among the otolith end organs, the saccule (height 6.90±0.28 mm, width 11.21±0.18 mm, TL 438.3±11.4 mm) was the largest, and among the otoliths, the saccular otolith (long axis 9.87±0.09 mm, TL 438.3±11.4 mm) was the largest. The histological structure of the otolith sac was similar to the semicircular canals, consisting of an inner epithelial layer, connective tissue, and an outer epithelial layer, and hair cells were present in the inner epithelial layer. The hair cells had ciliary bundle consisting of about 3 kinocilia and about 20 stereocilia on their apical region. Therefore, this study provides morphological and microanatomical information of the inner ear in the C. argus, which can serve as basic data for understanding the mechanism of hearing detection.



가물치 Channa argus 내이의 형태 및 미세해부학적 구조

김성진1, 김현진1*, 황두진2, 이정식1
1전남대학교 수산생명의학과
2전남대학교 해양생산관리학과

초록


본 연구는 가물치 Channa argus 내이의 미세해부학적 구조를 통해 경골어류 청각기관에 관한 기초정보를 제공하기 위해 수행하였다. 가물치 내이는 세 개의 반고리관(전반고리관, 수평반고리관, 후반고리관)과 세 개의 이석말단기관(구형낭, 난형낭, 호낭)으로 구성되었다. 반고리관의 길이는 전반고리관(81.72±4.42 mm, 전장 438.3±11.4 mm)에서 가장 길었으며, 수평반고리관(25.34±2.26 mm, 전장 438.3±11.4 mm)에서 가장 짧았다. 반고리관과 팽대부의 조직학적 구조는 내부상피층, 결합조직, 외부상피층으로 구성되었다. 팽대부의 내부상피층 일부는 섬모원주형 상피세포들로 구성되었으며, 내강의 팽대부마루와 연결되었다. 이석말단기관은 이석낭과 내부의 이석으로 구성되었다. 이석말 단기관 가운데 구형낭(폭 11.21±0.18 mm, 높이 6.90±0.28 mm, 전장 438.3±11.4 mm)이 가장 컸으며, 이석 가운데 구형낭이석(장경 9.87±0.09 mm, 전장 438.3±11.4 mm)이 가장 컸다. 이석낭의 조직학적 구조는 내부상피층, 결합조직, 외부상피층으로 구성되어 반고리관과 유사하였으며, 내부상피층에는 유모세포가 존재하였다. 유모세포는 자유면에 약 3개의 운동섬모와 약 20개의 부동섬모로 구성된 섬모다발을 가지고 있었다. 본 연구를 통해 가물치 내이의 형태 및 미세해부학적 구조를 제시함으로써 청각 감지 메커니즘의 이해를 위한 기초자료로 활용될 수 있을 것이다.



    서 론

    경골어류의 청각기관은 포식자 및 먹이 감지, 의사소통 등의 기능을 하며, 생존에 필수적이다(Fay and Popper, 2000). 청각기관 가운데 내이는 소리 감지, 회전 및 평형감각 기능을 하며, 종에 따라 구조와 기능이 다양하다(Ramcharitar et al., 2004). 내이의 구조에 관한 연구는 대서양연어 Salmo salar (Catania et al., 2007), 금붕어 Carassius auratus (Lanford et al., 2000), gray gurnard Eutrigla gurnardus (Ladich and Schulz-Mirbach, 2016) 등에서 보고되었다.

    수서생물은 다양한 수중소음에 노출되어 있으며, 높은 수준의 소음에 노출되면 청각 능력의 저하 및 생리적 변화(Park and Yoon, 2017), 내이의 감각모세포 손상(Badlowski and Boyle, 2024) 등이 나타난다. 이러한 영향은 어류의 행동, 먹이 활동 등의 변화를 초래하기 때문에 청각기관의 구조와 기능을 이해하는 것은 중요하다.

    가물치 Channa argus는 한국, 중국 등 아시아와 아프리카 일부 지역에 분포하는 육식성 담수어류이다(Herborg et al., 2007). 수중소음으로 인한 행동변화는 양식 가물치(Shin, 1995)에서 보고되었으나 감각기관의 기능조절에 실질적 역할을 하는 청각기관의 미세구조에 대한 연구는 매우 미비한 실정이다. 따라서 본 연구에서는 가물치 내이의 형태 및 미세해부학적 구조를 광학 및 전자현미경적으로 기재하여 경골어류 청각기 관에 관한 기초정보를 제공하고자 하였다.

    재료 및 방법

    본 연구에서는 전장 438.3±11.4 mm의 가물치 10개체를 사용하였다. 시료는 계측형질을 측정 후 해부하여 두부 내 내이의 위치를 이미지 촬영하였으며(Fig. 1), 내이를 적출하여 각 구성요소의 길이, 두께 등을 측정하였다(Fig. 2). 광학현미경 조직표본제작은 내이를 적출하여 10% 중성 포르말린에 24시간 고정한 후 반고리관과 이석말단기관을 횡단면으로 절취하여 파라핀 절편법을 통해 두께 2-5 ㎛의 연속절편을 제작하였다. 조직표본은 hematoxylin-0.5% eosin (H-E) 이중염색, Masson 삼중염색과 alcian blue-periodic acid and Schiff’s solution (AB-PAS, pH 2.5) 반응을 실시하였다. 주사전자현미경 관찰을 위해 2.5% glutaraldehyde (0.1M phosphate buffer, pH 7.4)로 고정한 후, 단계별 탈수를 진행하고 임계건조하여 FE-SEM으로 관찰하였다.

    결과 및 고찰

    가물치의 내이는 두개골 내부에 좌, 우 한 쌍으로 중뇌와 아가미 윗강(suprabranchial chamber) 사이에 위치하였으며 (Fig. 1B), 세 개의 반고리관(semicircular canal)과 세 개의 이석말단기관(otolith end organ)으로 구성되었다(Fig. 2). 금붕어(Lanford et al., 2000), croaking gourami Trichopsis vittata (Ladich and Popper, 2001), bluefin tuna Thunnus thynnus (Song et al., 2006), blue antimora Antimora rostrata (Deng et al., 2011) 등 여러 경골어류에서 내이는 세 개의 반고리관과 세 개의 이석말단기관으로 구성되며, 반고리관과 난형낭으로 구성된 상부 내이(pars superior), 구형낭과 호낭으로 구성된 하부 내이(pars inferior)로 구분되었다. 본 연구에서 가물치 내이의 구성은 보고된 경골어류들과 유사하였다.

    반고리관은 투명한 관으로 위치에 따라 전반고리관(anterior semicircular canal), 후반고리관(posterior semicircular canal), 수평반고리관(horizontal semicircular canal)으로 구분되었으며, 각 관의 시작부에는 팽대부(ampulla)가 존재하였다(Fig. 2). 반고리관의 길이는 전반고리관이 81.72±4.42 mm (전장 438.3±11.4 mm)로 가장 길었으며, 수평반고리관이 25.34±2.26 mm (전장 438.3±11.4 mm), 후반고리관이 71.81±2.52 mm (전장 471.85 mm)였다. 반고리관의 두께는 전반고리관이 0.41±0.08 mm (전장 438.3±11.4 mm), 수평반고리관이 0.78±0.06 mm (전장 438.3±11.4 mm), 후반고리관이 0.56±0.13 mm (전장 438.3±11.4 mm)로 수평반고리관이 가장 두꺼웠다. 각 반고리관의 팽대부 두께는 전반고리관이 2.22±0.04 mm (전장 438.3±11.4 mm), 수평반고리관 이 1.86±0.02 mm (전장 438.3±11.4 mm), 후반고리관이 1.61±0.04 mm (전장 438.3±11.4 mm)로 전반고리관에서 가장 두꺼웠다(Table 1). 경골어류 반고리관의 형태와 크기는 어류의 평형감각 기능과 연관이 있는 것으로 알려져 있으나 (Ladich and Schulz-Mirbach, 2016) 관련 연구는 미비하여 추후 연구가 필요할 것으로 생각된다.

    반고리관의 조직학적 구조는 내강으로부터 내부상피층, 결합 조직, 외부상피층으로 구성되었다(Fig. 3A). 내부와 외부상피층은 단층의 편평형 상피세포로 이루어져 있었으며, 결합조직은 콜라겐섬유와 섬유세포로 구성되어 있었다(Fig. 3B-D). 반고리관 팽대부에서도 유사한 구조를 보였으나(Fig. 4A), 내부상피층의 일부는 섬모원주형 상피세포들로 구성되었다. 또한, 상피세포의 섬모와 내강의 팽대부마루(cupula)가 연결되어 있었다 (Fig. 4B-D).

    경골어류의 반고리관 내부에는 림프액이 존재하며, 팽대부에는 젤라틴성 팽대부마루가 감각상피층의 섬모와 맞닿아 있다(Catania et al., 2007;Popper and Fay, 2011). 경골어류에서 반고리관은 어류의 움직임에 따라 내부 림프액의 유동과 감각상피층의 섬모 자극에 의해 평형감각에 관여하는 것으로 알려져 있다(Popper et al., 2003). 본 연구에서 반고리관의 상피층이 대부분 단층 편평형 상피세포로 구성된 것은 내부 림프액의 흐름을 유지하기 위한 구조적 특징이며, 팽대부에서 관찰된 섬 모원주형 상피세포와 팽대부마루의 연결은 평형감각에 관여하는데 적합한 구조이다.

    이석말단기관은 반고리관 하단에 위치하며, 구형낭(saccule), 난형낭(utricle), 호낭(lagena)으로 구성되었다(Fig. 5). 각 낭의 내부에는 이석이 존재하였으며, 크기에 차이가 있었다. 구형낭은 폭 11.21±0.18 mm, 높이 6.90±0.28 mm (전장 438.3±11.4 mm)로 이석말단기관 가운데 가장 컸으며, 난형낭과 호낭의 폭은 각각 3.80±0.12 mm, 3.10±0.08 mm, 높이는 2.48±0.05 mm, 2.08±0.03 mm (전장 438.3±11.4 mm)로 크기가 유사하였다. 이석은 구형낭이석(saccular otolith)의 장경이 9.87± 0.09 mm (전장 438.3±11.4 mm)로 이석 가운데 가장 크고, 난형낭이석(utricular otolith)의 장경은 1.78±0.01 mm (전장 438.3±11.4 mm), 호낭이석(lagenar otolith)의 장경은 2.19± 0.02 mm (전장 438.3±11.4 mm)였다(Table 2).

    이석말단기관의 형태와 크기는 어종에 따라 다양하며, 어류의 청각기능에 영향을 미칠 수 있다(Inoue et al., 2013;Kéver et al., 2014;Lin et al., 2019;Schulz-Mirbach et al., 2019;Echreshavi et al., 2021). 이석의 크기는 청각범위와 반비례하는 것으로 알려져 있으며, 해양 메기류인 hardhead catfish Arius felis는 메기과(Ariidae)의 다른 종보다 이석의 크기가 크지만, 청각범위는 50-1,000 Hz로 다른 종들(3,000 Hz 이상)보다 낮게 나타났다(Popper and Tavolga, 1981).

    부세 Larimichthys crocea (전장 20-22 cm)의 구형낭이석 장경은 10.0-15.0 mm이며, 500-800 Hz의 청각범위를 갖는다(Zhang et al., 2021). 본 연구의 가물치 구형낭이석은 부세에 비해 크기가 작았으며, 이러한 차이를 통해 가물치가 부세보다 높은 주파수 대역을 가질 것으로 추측된다.

    이석낭의 조직학적 구조는 내강으로부터 내부상피층, 결합조직, 외부상피층으로 구성되어 반고리관과 유사하였다. 내부상 피층은 단층으로 원주형 상피세포와 일부 유모세포(hair cell)로 이루어져 있었다(Fig. 6A, B). 유모세포의 섬모다발은 약 23 개의 섬모로 이루어져 있었으며, 섬모는 약 3개의 운동섬모 (3.15±0.43 μm)와 약 20개의 부동섬모(1.21±0.35 μm)로 구분되었다(Fig. 6C, D).

    이석말단기관은 청각기능에 관여하는 것으로 알려져 있으며, 각 이석낭 내부의 이석은 젤라틴성 이석막을 통해 감각상피층의 유모세포들과 연결되어 있다(Popper and Fay, 2011). 이러한 구조는 금붕어(Lanford et al., 2000), bluefin tuna T. thynnus (Song et al., 2006) 등의 경골어류와 유사하였다. 경골어류에서 이석의 움직임이 유모세포의 섬모를 자극하여 뇌와 연결된 신경다발을 통해 전달되어 소리를 감지한다(Platt and Popper, 1981). 본 연구에서 가물치 내이의 형태와 미세해부학적 구조는 보고된 경골어류들과 유사하였지만, 청각 감지 메커니즘에 대한 추후 연구가 필요할 것으로 판단된다.

    Figures

    JMLS-10-2-169_F1.jpg

    Morphometric characteristics (A) and location of the inner ear (Ie, B) in the northern snakehead, Channa argus. Br: brain, Sbc: suprabranchial chamber, Tl: total length.

    JMLS-10-2-169_F2.jpg

    Morphology and external morphometric of the inner ear in the northern snakehead, Channa argus. Aa: anterior semicircular canal ampulla, Asc: anterior semicircular canal, Asc-l: length of anterior semicircular canal, Ha: horizontal semicircular canal ampulla, Hsc: horizontal semicircular canal, Hsc-l: length of horizontal semicircular canal, L: lagena, Lo: lagenar otolith, Pa: posterior semicircular canal ampulla, Psc: posterior semicircular canal, Psc-l: length of posterior semicircular canal, So: saccular otolith, Uo: utricular otolith.

    JMLS-10-2-169_F3.jpg

    Histology of the semicircular canal in the northern snakehead, Channa argus. A and B: H-E stain, C: Masson’s trichrome stain, D: AB-PAS (pH 2.5) reaction. A: show the cross section of the semicircular canal, B-D: show the simple inner epithelial layer (Iel), connective tissue (Ct), outer epithelial layer (Oel). Fc: fibrocyte, L: lumen.

    JMLS-10-2-169_F4.jpg

    Histology of the semicircular canal ampulla in the northern snakehead, Channa argus. A and B: H-E stain, C: Masson’s trichrome stain, D: AB-PAS (pH 2.5) reaction. A: show the cross section of the semicircular canal ampulla, B-D: show the inner epithelial layer (Iel) consisted of ciliated columnar epithelial cells and connected with cupula (Cu). Ci: cilia, Ct: connective tissue, Fc: fibrocyte, L: lumen, Oel: outer epithelial layer.

    JMLS-10-2-169_F5.jpg

    Morphology of otolith end organs in the northern snakehead, Channa argus. A: dorsal view, B: ventral view. Asc: anterior semicircular canal, Hsc: horizontal semicircular canal, L: lagena, Lo: lagenar otolith, Oe-h: height of otolith end organ, Oe-w: width of otolith end organ, Ot-l: length of otolith, S: saccule, Sc-at: ampullae thickness of semicircular canal, Sc-t: thickness of semicircular canal, So: saccular otolith, U: utricle, Uo: utricular otolith.

    JMLS-10-2-169_F6.jpg

    Histology (A) and scanning electron micrograph (B-D) of inner epithelial layer of otolith end organ in the northern snakehead, Channa argus. A: show the simple ciliated columnar epithelial layer. Masson's trichrome stain, B: surface of the epithelial layer, C: lateral view of cilia (Ci) of the hair cell (Hc), D: dorsal view of cilia of the hair cell. Ki: kinocilia, St: stereocilia.

    Tables

    Morphometric characteristics of the three semicircular canals of the inner ears in the northern snakehead, Channa argus

    *Asc: anterior semicircular canal, Hsc: horizontal semicircular canal, Psc: posterior semicircular canal

    Morphometric characteristics of the otolith end organs and otolith in the northern snakehead, Channa argus

    References

    1. Badlowski G, Boyle KS. 2024. Repeated boat noise exposure damages inner ear sensory hair cells and decreases hearing sensitivity in Atlantic croaker (Micropogonias undulatus). J Exp Biol 227: jeb245093.
    2. Catania S, Germanà A, Cabo R, Ochoa-Erena FJ, Guerrera MC, Hannestad J, Represa J, Vega JA. 2007. Neurotrophin and Trk neurotrophin receptors in the inner ear of Salmo salar and Salmo trutta. J Anat 210: 78-88.
    3. Deng X, Wagner HJ, Popper AN. 2011. The inner ear and its coupling to the swim bladder in the deep-sea fish Antimora rostrata (Teleostei: Moridae). Deep-Sea Res I 58: 27-37.
    4. Echreshavi S, Esmaeili HR, Teimori A, Safaie M. 2021. Otolith morphology: A hidden tool in the taxonomic study of goatfishes (Teleostei: Perciformes: Mullidae). Zool Stud 60: 36.
    5. Fay RR, Popper AN. 2000. Evolution of hearing in vertebrates: The inner ears and processing. Hear Res 149: 1-10.
    6. Herborg LM, Mandrak NE, Cudmore BC, Maclsaac HJ. 2007. Comparative distribution and invasion risk of snakehead (Channidae) and Asian carp (Cyprinidae) species in North America. Can J Fish Aquat Sci 64: 1723-1735.
    7. Inoue M, Tanimoto M, Oda Y. 2013. The role of ear stone size in hair cell acoustic sensory transduction. Sci Rep 3: 2114.
    8. Kéver L, Colleye O, Herrel A, Romans P, Parmentier E. 2014. Hearing capacities and otolith size in two Ophidiiform species (Ophidion rochei and Carapus acus). J Exp Biol 217(14): 2517–2525.
    9. Ladich F, Popper AN. 2001. Comparison of the inner ear ultrastructure between teleost fishes using different channels for communication. Hear Res 154: 62-72.
    10. Ladich F, Schulz-Mirbach T. 2016. Diversity in fish auditory systems: One of the riddles of sensory biology. Front Ecol Evol 4:48.
    11. Lanford PJ, Platt C, Popper AN. 2000. Structure and function in the saccule of the goldfish (Carassius auratus): A model of diversity in the non-amniote ear. Hear Res 143: 1-13.
    12. Lin YJ, Qurban MA, Shen KN, Chao NL. 2019. Delimitation of tigertooth croaker Otolithes species (Teleostei: Sciaenidae) from the western Arabian Gulf using an integrative approach, with a description of Otolithes arabicus sp. nov. Zool Stud 58: 10.
    13. Park JH, Yoon JR. 2017. Overview of anthropogenic underwater sound effects and sound exposure criteria on fishes. J Korean Soc Fish Technol 53: 19-40
    14. Platt C, Popper AN. 1981. Fine structure and function of the ear. In: Tavolga WN, Popper AN, Fay RR. (Eds.), Hearing and sound communication in fishes. Springer, New York, pp 3-38.
    15. Popper AN, Fay RR, Platt CC, Sand O. 2003. Sound detection mechanisms and capabilities of teleost fishes. In: Collin SP, Marshall NJ. (Eds.), Sensory processing in aquatic environments. Springer, New York, pp. 3-38.
    16. Popper AN, Fay RR. 2011. Rethinking sound detection by fishes. Hear Res 273: 25-36.
    17. Popper AN, Tavolga WN. 1981. Structure and function of the ear in the marine catfish, Arius felis. J Comp Physiol 144: 27-34.
    18. Ramcharitar JU, Deng X, Ketten D, Popper AN. 2004. Form and function in the unique inner ear of a teleost: The silver perch (Bairdiella chrysoura). J Comp Neurol 475: 531-539.
    19. Schulz-Mirbach T, Ladich F, Plath M, Heß M. 2019. Enigmatic ear stones: What we know about the functional role and evolution of fish otoliths. Biol Rev 94(2): 457–482.
    20. Shin HO. 1995. Effect of the pilling work noise on the behavior of snakehead (Channa argus) in the aquafarm. J Korean Fish Soc 28(4): 492-502.
    21. Song J, Mathieu A, Soper RF, Popper AN. 2006. Structure of the inner ear of bluefin tuna Thunnus thynnus. J Fish Biol 68: 1767-1781.
    22. Zhang XH, Tao Y, Zhou YL, Tang LG, Liu M, Xu XM. 2021. Acoustic properties of the otolith of the large yellow croaker Larimichthys crocea (Perciformes: Sciaenidae). Zool Stud 60: 64.